Tromboelastografía, Montaje de la Muestra y Tipos de Muestra

• Tubo con kaolín
• Copa blanca y/o copa azul (con heparinasa para contrarrestar las muestras contaminadas con hepa­rina)
• Pipeta para medición de la mues­tra
• Cloruro de calcio para revertir las muestras con citrato.
• Pipetas automáticas para medición de la muestra.

Colocar 1 cc de la muestra en el tubo con kaolín, mezclar por inversión mí­nimo 6 veces y montar en las diferen­tes copas de acuerdo con las caracte­rísticas de la muestra:

Sangre total activada

Kaolín k: se vierte una muestra que no está contaminada con heparina en el tubo con kaolín y se coloca en una copa blanca.

El kaolín (silicato de alu­minio hidratado) actúa como un ac­tivador de contacto con la superficie, el cual activa el factor XII y la agregación plaquetaria estimulando la capa­cidad de reserva de coagulación de una muestra de sangre completa hasta la mitad.(11) Esta prueba dura 30 mi­nutos aproximadamente.

Kaolín heparinasa KH: se vierte la muestra en el frasco de kaolín y se monta en copa azul con heparinasa, para revertir el efecto de la heparina de muestras con riesgo de contami­nación con el medicamento que para términos prácticos nos referiremos a tres situaciones: pacientes que hayan recibido heparina, muestras tomadas de catéter central o línea arterial o pa­cientes con reservas de heparina, como es el caso del paciente hepático.(9-11)

Sangre total citratada

Citratada con kaolín CK: muestra que fue tomada en tubo azul; se adi­ciona calcio para revertir el citrato y se monta en copa blanca.

Citratada con kaolín y heparina­sa CHK: muestra tomada en tubo azul, que tiene riesgo de estar contaminada con heparina, se revierte el citrato con cloruro de calcio y se monta en copa azul para revertir la heparina.(11)

Sangre total o nativa

Su resultado puede durar de 40 minutos a 1 hora o hasta 2 horas, razón por la cual este tipo de muestra es usada pocas veces.

En este caso se toma una muestra de sangre y se vier­te en un frasco seco de polipropileno, donde se toma la cantidad necesaria y se vierte en una copa blanca sin ne­cesidad de adicionar kaolín para ace­lerar el proceso de coagulación.

Para la muestra tomada en jeringa se debe obtener una cantidad de 0,36 ml o 360 microlitros para verter en las copas.

Para las muestras tomadas en tubo citratado (tapa azul) se debe to­mar 0,34 ml 0 340 microlitros y adi­cionar 0,02 ml de calcio para un total de 0,36 ml.(9-11)

Generalmente cuando la muestra está contaminada de heparina, se montan 2 muestras: 1 en copa blanca y otra en copa azul con heparinasa para hacer la comparación y tener un resultado más confiable.

Después de montada la muestra para su lectura en el tromboelastógrafo se debe evitar cualquier interferencia que pueda alterar el trazo y por ende el resultado.

Las alteraciones más comu­nes son causadas por desniveles en la mesa o base donde se encuentre ubi­cado el equipo, movimientos o vibra­ciones externas, interferencia en los puertos que conectan el aparato al transductor o a la pantalla o genera­das por algún tipo de aparato, afec­tando el voltaje de funcionamiento del tromboelastógrafo.(9)

Control de calidad

Así como se deben tener en cuenta todas las precauciones en la obten­ción y procesamiento de la muestra es necesario que se programen con­troles de calidad biológicos los cuales permiten documentar la confiabilidad de los resultados arrojados por el tromboelastógrafo.

Este control con­siste en la verificación del funciona­miento tanto mecánico como electró­nico y además procedimientos de control con biológicos. Estas revisio­nes deben hacerse mínimo dos veces por semanas.(9)

Los autores no declaran conflicto de interés.

Referencias bibliográficas 

• 1. Raffán F, Ramírez F, Cuervo J, y col. Trom­boelastografía. Revista Colombiana de Anes­tesiología 2005; 33:181-6.
• 2. Oshita K, Az-ma T, Osawa Y, et,al. Quan­titative measurement of thromboelastogra­phy as a function of platelet count. Anesth Analg 1999;89:296–9.
• 3. Roeloffzen, W, Thrombocytopenia affects plasmatic coagulation as measured by thrombelastography. Blood coagulation and fibrinolysis 2010; 21:389–97.
• 4. Park MS, Martini W, Dubick M, et al. Thromboelastography as a better indicator of hypercoagulable state after injury than prothrombin time or activated partial throm­boplastin time. J. Trauma. 2009; 67:266–76.
• 5 Shore-lesserson L, Heather EM, Marietta D, et al. Thromboelastography guided thera­py algorithm reduces transfusion in com­plex cardiac surgery. Anesth Analg 1999; 88:312–9.
• 6. Klein S, Slaughter T, Vail P, et al. Throm­boelastography as a perioperative measu­re of anticoagulation resulting from low molecular weight heparin: a comparison with anti-xa concentrations. Anesth Analg 2000; 91:1091–5.
• 7. Kashuk J, Moore E, Sawyer M. Postinjury coagulopathy management goal directed resuscitation via POC thrombelastography. Annals of Surgery 2010;251: 604–614.
• 8. Durila M, Kalincik T, Pacakova Z, et. al. Discard volume necessary for elimination of heparin flush effect on thromboelasto­graphy. Blood coagulation and fibrinoly­sis 2010; 21:192–5.
  9. Haemoscope Corporation. Teg 5000. User´s manual. EEUU. 2004.
• 10. Ramaker A, Meyer P, Meer J, et.al. Effects of acidosis, alkalosis, hyperthermia and hypothermia on haemostasis: results of point of care testing with the thrombo­elastography analyser. Blood and fibrino­lysis, 2009; 20: 436-9.
• 11. Srinivasa V, Gilbertson L, MD, Bhavani-shankar K. Thromboelastography: where is it and where is it heading? International Anesthesiology Clinics 2001; 39:35–49.