Carcinoma escamocelular invasivo

• Infiltración perineural
• Localización labial: (Clak IV, V o 4 mm de profundidad)
• Localización en la oreja.
• Tumores con diámetros entre 0,5 o > 2 cm
• Tumores recurrentes
• Pacientes inmunosuprimidos
• Tumores desarrollados sobre lesiones preexistentes.

Es el segundo tumor que es tratado con cirugía micrográfica de Mohs. En una serie de 3.355 tumo¬res tratados con cirugía micrográfica de Mohs en la clínica Mayo, de Rochester, el 21% fue carcinoma escamocelular (2).

El tratamiento del carcinoma escamocelular casi siempre representa un reto mayor que el carcinoma basocelular, porque primariamente presenta metástasis locales creando áreas libres de tumor, en la cual acúmulos de células tumorales no continúan con la masa principal dominante.

Metástasis locales ocurren comúnmente después de tratamientos no exitosos, ya que la masa tumoral debe ser continua para ser intervenida por la cirugía micrográfica de Mohs. Metástasis locales y distantes reducen la probabilidad de erradicación tumoral completa.

En grandes series de carcinoma escamocelular tratados con cirugía micrográfica de Mohs, la tasa de curación a cinco años de pacientes con metástasis fue del 16% comparada con tasas de curación del 98% en aquellos pacientes sin metástasis (2-7).

En general, la tasa de metástasis de carcinoma escamocelular primario de la piel se estima entre el 2% y el 3%. La mayoría de metástasis comprometen los ganglios linfáticos regionales pero extensiones hematógenas a órganos distantes han sido reportadas entre el 5% y el 10% (2).

Los factores que se correlacionan con los ries¬gos de recurrencias y metástasis son: localización del tumor, invasión perineural, tamaño, diferenciación histológica, profundidad, tratamientos previos e inmunosupresión.

El carcinoma escamocelular desarrollado en áreas lesionadas por el sol raramente hace me-tástasis, si esto ocurre ha sido informado entre el 5,2% y 5,9% de los pacientes (20).

El carcinoma escamocelular que se desarrolla en áreas de inflamación crónica posee alto riesgo de metástasis. En cicatrices de quemaduras, metastatiza el 18%, en osteomielitis crónica el 31%, en áreas irradiadas el 20% y sobre el lupus eritematoso discoide el 30% (2).

La invasión perineural por el carcinoma es¬camocelular es más frecuente que el carcinoma basocelular. El carcinoma escamocelular con com¬promiso tumoral perineural puede alcanzar varios centímetros del sitio inicial de entrada del tumor al espacio perineural (2,7,14,21-24).

Se encuentra invasión perineural en el 3,7% de los carcinomas escamocelulares (24). Grandes carcinomas es-camocelulares tienen mayores probabilidades de hacer invasión perineural. En el 64% de los tumores iguales o superiores a 2,5 cm de diámetro se ha encontrado invasión perineural, pero sólo en 11% de los tumores menores de 2,5 cm de diámetro (2).

El carcinoma escamocelular neurotrópico del labio tiene pobre pronóstico, la incidencia de invasión perineural en lesiones del labio es del 1,9 al 10,8% (24). La sobrevida a cinco años de estos tumores en esta localización es del 35% (17).

Los tumores mal diferenciados igualmente demuestran invasión perineural. El carcinoma esca¬ mocelular con invasión perineural tratado por cirugía micrográfica de Mohs posee las más bajas tasas de recurrencias locales y metástasis que constan entre el 0%, 5,9% y 8%, respectivamente (24); comparados con las tasas de recurrencias locales y metástasis utilizando la escisión quirúrgica que están entre 47,2% y 34,8% respectivamente (24).

Las tasas de curación del carcinoma escamoce¬lular tratados con cirugía micrográfica de Mohs son imprecisos. Una serie de 3.299 casos analizados por el mismo doctor Mohs en los que incluyó casos con carcinoma escamocelular metastásico y de gran extensión local, encontró que tumores de 2 cm de diámetro lograron tasas de curación a cinco años mayores al 99%, mientras que lesiones entre 2 y 3 cm de diámetro, curaron en el 82% y lesiones superiores a 3 cm de diámetro tuvieron tasas de curación del 59% a cinco años (2) .

El grado histológico del tumor influyó en la tasa de curación. Los cuatro grados de carcinoma escamocelular originalmente definidos por Broders en 1921 están basados en el grado de maduración o diferenciación celular. Los carcinomas escamocelulares de mejor diferenciación, grados 1 y 2 tuvieron tasas de curación a cinco años entre el 99 y 94 % respectivamente.

Las tasas de curación a cinco años cayeron al 74% y 45% para los menos diferenciados, grados 3 y 4 respectivamente (2). El hecho que el 63,7% de las lesiones metastásicas son bien diferenciadas enfatiza que esta variante histológica por sí sola no es factor pronóstico (2).

Las bajas tasas de curación de tumores grandes y con alto grado de indiferenciación, son principalmente causadas por metástasis y extensión a estructuras vitales. La mayoría que han sido curados con cirugía micrográfica de Mohs habían sido considerados incurables por otros métodos (2).

La profundidad tumoral es el nivel donde se encuentra el tumor. Existen mínimos riesgos de metástasis (6,7%) en las lesiones Clark I a III o lesiones hasta 4 mm de profundidad (2). El riesgo de metástasis incrementa marcadamente (45,7%) en las lesiones Clark IV o V o mayores a 4 mm de profundidad.

Las lesiones labiales mayores a 6 mm y cutáneas mayores de 8 mm tienen alto riesgo de metástasis. Los carcinomas escamocelulares de la piel y el labio en los que ha fallado su curación por tratamientos previos, presentan significativamente altas tasas de metástasis que aquellos que no han recibido tratamiento (2).

En un reciente estudio de 1.263 pacientes con carcinoma escamocelular tratado con cirugía de Mohs y seguimiento a 5 años, se informan recurrencias de 3,9% distribuidas en: 2,6% de los tumores primarios y 5,9% de los tumores recurrentes; no se encontraron asociaciones entre recurrencias a 5 años y tamaño del tumor, subtipo histológico o localización (26). (Lea también: Cirugía Plástica básica para el no especialista)

La tasa de metástasis de lesiones recurrentes localmente es del 25,1% para carcinomas escamocelulares de la piel, 45% para carcinomas escamocelulares de la oreja y 31,5% para carcinoma escamocelulares del labio (25).

El carcinoma escamocelular que recurre localmente en el sitio del tratamiento previo, tiene mayor probabilidad de desarrollar nuevas recurrencias. La recurrencia de retratamiento usando la cirugía escisional, es del 23,3% y con la cirugía micrográfica de Mohs, es del 10% (17).

La incidencia de carcinoma escamocelular en pacientes inmunosuprimidos es del 2,5 % la cual es 5 a 20 veces más alta que la incidencia en la población general (25).

Incluye pacientes de trans-plante renal, leucemia, linfoma, epidermodisplasia verruciforme, micosis fungoide en tratamiento con agentes tópicos y el uso de varios agentes como ciclosporina, prednisona, azatioprina, ciclofosfamida en el tratamiento de varias enfermedades incluyendo Psoriasis, Epoc, penfigoide cicatricial, enfermedad renal, artritis reumatoidea, anemia anaplásica (25).

Hay una notable ausencia en pacientes con SIDA probablemente por su corta sobrevida en comparación con los anteriores (25).

Existe correlación entre el grado de inmunosupresión celular, la infiltración linfocítica y el carcinoma escamocelular; la infiltración inflamatoria tumoral es de buen pronóstico, la ausencia se correlaciona con recurrencias locales y metástasis (25).

En pacientes con transplantes renales la res¬puesta inflamatoria en el carcinoma escamocelular está disminuida en comparación con pacientes controles normales de carcinoma escamocelular. Esos estudios sugieren que la inmunosupresión y la respuesta celular del huésped son importantes al determinar la incidencia y agresividad del carcinoma escamocelular mucocutáneo (25).

La localización, recurrencias y curación a cinco años, demuestran que la cirugía de Mohs fue supe¬rior comparada con otras modalidades terapéuticas (crioterapia, curetaje, electrodesecación, radioterapia y escisión quirúrgica.

En los carcinomas escamo¬celulares localizados en la piel con modalidades Mohs la curación fue del 92,1% y con Mohs 96,9%, tumores en el labio tratados con modalidades no Mohs, la curación fue del 89,5% y con Mohs fue del 97,7%. En los tumores localizados en la oreja usando terapias no Mohs fue del 81,3% y con Mohs 94,7% y en tumores recurrentes con no Mohs fue 76,7% y con Mohs fue del 90% (25).

La cirugía micrográfica de Mohs está indicada en el tratamiento de pacientes con carcinoma escamocelular de alto riesgo pronóstico como son aquellos localizados en el labio, oreja, con tamaños mayores de 2 cm, pobre diferenciación histológica, lesiones profundas mayores de 4 mm o Clark IV o V, neurotrópicas, recurrentes, desarrolladas sobre lesiones preexistentes no irradiadas por el sol o en pacientes inmunosuprimidos.

Las modalidades terapéuticas diferentes a la cirugía micrográfica de Mohs están indicadas en pacientes de bajo riesgo (25,26,28).

La localización de los tumores está relacionada con el alto riesgo pronóstico. Aquellos localizados en la oreja tienden a recurrir en el 18,7% y metastizar en el 11%. Los localizados en el labio recurren en el 10,5% y metastizan en el 13,7% (25).

Si se quiere ampliar el conocimiento sobre este tema, el lector puede consultar referencias adicionales (29-74).

Referencias

1. Rapini RP. False-negative surgical margins. Adv Dermatol 1995; 10: 137-148.
2. Shriner DL, McCoy D.K, Goldberg DJ, Wagner RF. Mohs Micrographic Surgery. J Am Acad Dermatol 1998; 39: 79-97.
3. Bennett RG. Mohs surgery. New Concepts And Application. Dermatol clin 1987; 5: 409-428.
4. Lang PG. Mohs Micrographic surgery. Fresh – Tissue technique. Dermat clin. 1989; 7: 613-626.
5. Greenway H T,Maggio K L.Mohs micrographic surgery and coetaneous Oncology. In:Robinson j k, hanke C W, Sengelmann R D, Siegel D M. (Ed). Surgery of the Skin proedural Dermatology.2005 Elsevier Inc 777-800.
6. Bricca G M, Brodland D. Mohs Surgery:The Full spectrum Of application. In:Riegel D S, Friedmann r J, Dzubow L M, Reintgen D S,Bystryn J-C, Marks r. (Ed). 2005 Elsevier Inc 537-548.
7. Ad Hoc Task Force, Connolly SM , Baker DR, Col¬diron B M, et al. AAD/ ACMS/ASDSA/ASMS 2012 appropiate use criteria for Mohs micrographic surgery: a report of the American Academy of dermatology, American College of Mohs Surgery, American So¬ciety for Dermatologic Surgery Assosiation, and the American Society for Mohs surgery. J Am Acad Dermatol 2012 ;67:531-50.
8. Kimyai– Asadi A, Bolberg L H, Jih MH. Accuray of serial transverse. Cross-sections in detecting residual basal cell carcinoma at the surgical margins of an elliptical excision specimen. J Am Acad Dermatol 2005; 53: 469– 474.
9. Larson PO, Donnell DO, Hetzer M. Dogan M. Mohs fixed tissue preparation in Maloney M, Torres A Hoff-mann TJ Helm KF (Ed): surgical dermatopathology, Massachusetts. Blackwell science, Inc. 1999; p. 49-78.
10. Alyssa YK, Bennett RG. Determining cancer at surgical margins. In: Maloney M, Torres A, Hoffmann TJ, Helm KF (Ed): surgical dermatopathology. Massachusetts. Backwell science, Inc, 1999; p.107-123
11. D Huang C , Boyce Sarah, Morthington M, Desmond R, Soong S-J. Randomized, controlled surgical trial of preoperative tumor curettage of basal cell carcinoma in Mohs micrographic surgery. J am Acad Dermatol 2004; 51: 585-591.
12. Clyton BD, Leshin B, Hitchcock. MG, Marks M, white WL Utility of rush paraffin-embedded tangential sec-tions in the management of coetaneous neoplasm’s. Dermatol Surg 2000; 26: 671-678.
13. Lang PG. Osguthorpe J D. Indications and Limitations of Mohs micrographic surgery. Dermatol clin 1989; 7: 627-644.
14. Blechman A B, Patterson J W , Russell m A . Appli¬cation of Mohs micrographic surgery appropriate-use critera to skin cancers at a iniversity healt system. J Am Acad Dermatol 2014;71: 29-35
15. Barrett TL. Greenway HT, Massullo V, Carlson C. Treatment of basal cell carcinoma and squamous cell carcinoma with perineural invasion. Adv Dermatol 1993; 8: 277-305.
16. Forman S B,Ferringer T C,Garret A B. Basal Cell Carcinoma Of The Nail Unit J Am Acad Dermatol 2007;56:811-814
17. Telfer NR, Colver GB, Bowers PW.Guidelines for the management of basal cell carcinoma. Br J Dermatol 1999; 141: 415-423
18. Leibovitch I, Huigol s c, selva D, Richards s, paver R. Basal cell carcinoma treated with Mohs surgery in Australia II. Outcome at 5 years. Follow– up. J am Acad Dermatol 2005; 53: 452-457.
19. Leibovitch I, Huigol s c, selva D, Richards s, paver R. Basal cell carcinoma treated with Mohs surgery in Australia III. Perineural invasion. J am Acad Dermatol 2005; 53: 458-463.
20. Larrabee WF. Immediate repair of facial defects. Dermatol Clin 1989; 7:661-676.
21. Lawrence N, Cottel W. Squamous cell carcinoma of skin with perineural invasion . J Am Acad Dermatol 1994; 31: 30-33.
22. Malhotra R, James C L, Selva D, Huynh N, Huigol S C. the Australian Mohs database: periocular squa¬mous intraepidermal carcinoma. Opthalmology 2004; 111:1925-9.
23. Matorin PA, Wagner RF Jr. Mohs Micrographic surgery: tecnical difficulties posed by perineural invasion. Inter J Dermatol 2002; 31:83-6.
24. Feasel A M, Brown TJ, Rogle MA, tschen J A, Nelson B R. perineural invasion of cutaneous malignances. Dermatol Surg 2001; 27:531-42.
25. Rowe DE, Carroll RJ, Day CL. Pronostic factors for local recurrence, metastasis and survival rates in squamous cell carcinoma of the skin, ear and lip. Implications for treatment modality selections. J Am Acad Dermatol 1992; 26: 976-990.
26. Leibovitch I, Huigol s c, selva D, Richards s, paver R. cutaneous squamous cell carcinoma treated with Mohs micrographic surgery in Australia I. Experience over 10 years. J am Acad Dermatol 2005; 53: 253-260.
27. Papa CA, Ramsey MH. Digital imaging for mapping Mohs surgical specimens. J Am Acad Dermatol 2000; 43: 712-713.
28. Mohs FE. Mohs Micrographic surgery. A historical perspective. Dermatol clin 1989; 7: 609-611.
29. Adams BB, R Gloster HM. Double nicking for Mohs tissue specimen. J Am Acad Dermatol 2000; 42: 1067-1068.
30. Gloster HM, Taylor AF. Surgical Pearl: The Use of Multiple Different tissue specimens on the same glass slide to enhance the efficiency of frozen section preparation in Mohs micrographic surgery. J Am Acad Dermatol 1998; 39: 107-108.
31. Leibovitch I, Huigol SC, Selva D, Richards S, Paver R. Cutaneous squamous cell carcinoma treated with Mohs micrographic surgery in Australia II. Perineural invasion. J Am Acad Dermatol 2005; 261-266.
32. Broadland DG, Zitelli JA. Surgical margins for excision of primary cutaneous squamous cell carcinoma. J Am Acad. Dermatol 1992; 27: 241-248.
33. Heaphy M.R., r Ackerman AB. The nature of solar keratosis: a critical review in historical perspective. J Am Acad Dermatol 2000; 43:138-150.
34. Leibovitch I, shyamala CH, selva D, et al. Cutaneous squamous carcinoma in situ (Bowen´s disease): treatment with Mohs micrographic surgery. J Am Acad Dermatol 2005; 52: 997-.1002.
35. Wang S Q,Goldberg L H,Nemeth A . The merits of Adding toluidine blue-stained slides in Mohs surgery in the treatment of a microcystic adnexial carcinoma. J Am Acad Dermatol 2007,56:1067-1069
36. riedman. PM, Friedman RH, Jiang B, Nourik, Amo¬nette R, Robins P. Microcystic adnexal carcinoma: Collaborative series rewiew and update. J. Am Acad Dermatol 1999; 41: 225-231.
37. Leibovitch I, shyamala C H, selva D, et al. Microcystic adnexal carcinoma: treatment with Mohs micrographic surgery. J A m Acad Dermatol 2005; 52: 295-300.
38. Huether MJ, Zitelli JA, Broadland DE. Mohs microgra¬phic surgery for the treatment of spindle cell tumors of the skin. J Am Acad Dermatol 2001; 44: 656-659.
39. Hendi A, Brodland D G, zitelli J A. Extramammary paget´s disease: surgical treatment with Mohs mi-crographic surgery. J A m Acad Dermatol 2004; 51: 767-773.
40. O´Connor W J, Lim K , zalla MJ, Gangnot M, Otley cc, Nguyen TH, et al. Comparison of Mohs micrographic surgery and wide excision for extramammary paget´s disease. Dermatol. Surg 2003; 29: 723-7.
41. Cohen LM. What’s new in lentigo maligna. Adv Dermatol 1999. 15: 203-231.
42. Menaker G M, chiang J K, tabila B, Moy R L. Rapid HMB– 45 staining in Mohs micrographic surgery for melanoma in situ and invasive melanoma. J am Acad Dermatol 2001; 44: 833-836.
43. Grevey SC, Zax RH, McCall MW. Melanoma and Mohs Micrographic surgery. Adv Dermatol 1995; 10: 175-199.
44. Johnson TM, Smith JW, Nelson BB, Chang A. Cu¬rrent therapy for cutaneous melanoma. J Am Acad Dermatol 1995; 32: 689-706.
45. Zitelli JA, Brown C, Hanusa BH. Mohs Micrographic surgery for the treatment of primary cutaneous me-lanoma. J Am Acad Dermatol 1997; 37: 236-245.
46. Zitelli JA, Brown C, Hanusa BH. Surgical margins for excision of primary cutaneous melanoma. J Am Acad Dermatol 1997; 37:422-429.
47. Weihstock MA, Sober AJ. The risk of progression of lentigo maligna to lentigo maligna melanoma. Br J Dermatol 1987; 116: 303-310.
48. Cohen LM. Lentigo maligna and lentigo maligna melanoma. J Am Acad Dermatol 1995; 33: 923-936.
49. Robinson JK. Margin control for lentigo maligna. J Am Acad Dermatol 1994; 31(1): 79-85.
50. Kelley L C, starkus L. Immunohistochemical staining of lentigo maligna during Mohs micrographic surgery using Mart-1. J am Acad Dermatol 2001; 46: 78-84.
51. Bienert TN, trotter MJ, Arlette JP. Treatment of cuta¬neous melanoma of the face by Mohs micrographic surgery. J. cutan med surg 2003; 7:25-30.
52. Hitchcock MG, Leshin B. White WL. Pitfalls in frozen section interpretation in Mohs micrographic surgery. Adv Dermatol 1998; 13: 427-462.
53. Boyer J D, zitelli J A, Brondland D G, D’ Angelo G D. Local control of primary Merkel cell carcinoma: Review of 45 cases treated with Mohs micrographic surgery with and without adjuvant radiation. J Am Acad Dermatol 2002; 47: 885-892.
54. Piérdard G E, Fazzar, Henry F, et al. collision of primary malignant neoplasms on the skin: the con-nection between malignant melanoma and basal cell carcinoma. Dermatology; 1997; 194(4): 378-379.
55. Spencer J M, Nossa– R, Tse D t, Sequeira M. Se¬baceus carcinoma of the eyelid treated with Mohs Micrographic surgery. J Am Acad Dermatol 2001; 44: 1004-1009.
56. Katz K H, Helm K F, Billingsley E M, Maloney M E. Dense inflammation does not mask residual primary basal cell carcinoma during Mohs micrographic surgery. J Am Acad Dermatol 2001: 45: 231-238.
57. Mondragon RM, Barrett TL. Current concepts: the use of immunoperoxidase techniques in Mohs microgra¬phic surgery. J Am Acad Dermatol 2000; 43:66-71.
58. Jiménez FJ, Clark RE. Buchanan MD. Kamino H. Lymphoepithelioma – like carcinoma of the skin trea¬ted with Mohs micrographic surgery in combination with immune staining for citoqueratinas. J Am Acad Dermatol 1995; 32: 878-881.
59. Jiménez FJ, Grichnik JM, Buchanan MD, Clark RE. Inmunohistochemical techniques in Mohs microgra¬phic surgery: Their potential use in the detection of neoplastic cell masked by inflammation. J Am Acad Dermatol 1995; 32:89-94.
60. Stonecipher MR, Leshin B, Patrick J,White WL. Management of lentigo maligna and lentigo malig¬na melanoma with paraffin– embedded tangential sections: Utility of immunoperoxidase staining and supplemental vertical sections. J Am Acad Dermatol 1993; 29: 589-594.
61. Banfield CC, Dawber PR, Walker N. et al. Mohs micrographic surgery for the treatment of in situ nail apparatus melanoma: A case report . J Am Acad Dermatol 1999; 40: 98-99.
62. Siegle JR, Schuller DE. Multidisciplinary surgical approach to the treatment of perinasal nonmelanoma skin cancer. Dermatol Clin 1989; 7: 711-731.
63. Weisberg NK, Bertagnolli MM, Becker DS. Combined Sentinel lymphadenectomy and Mohs micrographic surgery for the high– risk cutaneous squamous cell carcinoma. J Am Acad Dermatol 2000; 43: 483-488.
64. Bernstein G. Healing by secondary intention. Dermatol Clin 1989; 7: 645-660.
65. Leonard A L, Hanke W . Second Intention healing for intermediate and large postsurgical defects of the lip. J Am Acad Dermatol 2007 ; 57:832-835
66. Faizal M , Bulla F. Carcinoma faciales múltiples de alta agresividad, manejo y técnicas de reconstrucción quirúrgica. Rev. Col. Dermatol: 1998; 6 (2): 25-20.
67. Thibault MJ, Bennett RG. Success of delayed full – thickness skin grafts after Mohs micrographic surgery. J Am Acad Dermatol 1995; 32: 1004-1009.
68. Fritz T, Burg G, Hafner J. Eyebrow reconstruction with free skin and hair– bearing composite graft. J Am Acad Dermatol 1999; 41: 1008-1010.
69. Madani S, Huilgol S, Carruthers A. Unplanned in¬complete Mohs micrographig surgery. J Am Acad Dermatol 2000; 42: 814-819.
70. Cook J, Zitelli JA. Mohs micrographic surgery : A cost analysis. J Am Acad Dermatol 1998; 39: 698-703.
71. Silapunt s, Peterson S R. Alcalay J, Golberg Lh. Mohs tissue mapping and processing: a survey study. Dermatol surg 2003; 29: 1109-12.
72. Lebwohl M, Bernhard JD. The case for micrographi¬cally controlled skin surgery. Editorial. J AM Acad Dermatol 2000; 42: 698-699.
73. Liang CL, Jambusaria-Pahlajani A, Karia PS, et al. A Systematic review of outcome data for dermatofibro¬sarcoma protuberans with and without fibrosarcoma¬tous change. J Am Acad Dermatol 2014,71:781-786.
74. Bricca G M, Brodland D G, Ren D, zitelli J A. Cuta¬neous head and neck melanoma treated with Mohs micrographic surgery. J Am acad Dermatol 2005; 52: 92-100.

Recibido: Abril 2, 2015
Aceptado: Mayo 2, 2015
Correspondencia: Michel Faizal
mfaizalg@gmail.com

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VER 1 comentario

  1. carlos barco j dice:

    falta darle valor a la ecografia de lechos ganglionar cervical en los carcinomas
    escamo celulares.