Citrulina Plasmática como Suplemento Oral

Se han llevado a cabo pocos estudios en relación con la farmacocinética de la citrulina, pero confirman que ella se absorbe eficientemente cuando se administra por vía oral.

La citrulina es un farmaconutriente candidato a sustentar el metabolismo de proteínas y de enfermedades intestinales, y en ancianos malnutridos con resistencia a la nueva nutrición. La administración de citrulina puede constituirse en una estrategia terapéutica para el control de las anormalidades en el metabolismo del óxido nítrico en los macrófagos, que desempeña un importante papel en la defensa contra agentes invasores (6).

La arginina se vuelve esencial en condiciones de estrés por su significativa degradación por la arginasa, que lleva a disminución de la inmunidad (49). Tal situación puede mejorar por la administración de citrulina, que será utilizada por los linfocitos T para la síntesis de la arginina (8).

Los pacientes con alteraciones hematológicas relacionadas con la forma de los hematíes (anemia falciforme), pueden evolucionar con mejoría clínica después del suplemento de citrulina, que actúa como precursor del óxido nítrico, el cual promueve dilatación y la protección de los vasos, lo que permite la adecuada circulación de los hematíes falciformes en los vasos sanguíneos (8).

En los ancianos, así como en cerca de 30% a 60% de los pacientes hospitalizados, la desnutrición es frecuente y perjudica el metabolismo de las proteínas, debido a un mayor secuestro esplácnico de aminoácidos, sobre todo en el periodo posprandial.

Tal situación también se da en el trauma, el cáncer y la diabetes tipo 2. Como consecuencia, la concentración de aminoácidos en el plasma se torna inadecuada. Así como no hay hiperaminoacidemia (balance nitrogenado negativo), no hay estímulo para la síntesis proteica, lo que convierte a estos pacientes especialmente resistentes al intento de nutrición. Si se considera que la citrulina no es extraída por el hígado a través de la circulación esplácnica, ella llega intacta a los riñones, donde es transformada en arginina; ésta es liberada hacia los demás tejidos, a fin de promover la síntesis proteica, además de estimularse la secreción de insulina, que es otro factor positivo para la síntesis de proteínas. El incluir la citrulina en el soporte nutricional de esos individuos, podría aumentar la disponibilidad de arginina en los tejidos periféricos de forma más eficiente que la arginina oral, pues ésta sufre intensa degradación en los hepatocitos por la actividad de la arginasa hepática (50).

Smith et al. (51) analizaron en el 2006 la seguridad de un suplemento oral con citrulina en niños sometidos a bypass cardiopulmonar, y concluyeron que la citrulina puede ser efectiva para reducir la hipertensión pulmonar posoperatoria al aumentar la concentración plasmática de citrulina y, consecuentemente, de arginina, que es precursora del óxido nítrico. (2,52,53).

Técnicas de Dosificación de la Citrulina Plasmática

Fisiológicamente, la concentración de aminoácidos en el plasma es difícil de detectar, pues la concentración celular es mayor que la concentración plasmática.

En las décadas de los 70 y los 80, se publicaron algunos métodos de análisis de la actividad de la transferasa de ornitina carbamoilo, enzima que promueve la condensación de la ornitina con carbamilfosfato en citrulina. Tal actividad es medida por colorimetría. Así, el valor de la citrulina plasmática se analiza por espectrometría (absorbancia), sin desproteinización, lo que garantiza buena reproductibilidad, bajo costo y fácil técnica de realización. Simultáneamente, exige óptimas condiciones para que pueda ser realizada eficazmente, lo que incluye temperatura y luminosidad (52-53).

La cromatografía es una columna intercambiadora de iones que sirve para purificar soluciones por medio de las cargas presentes en la solución de ninhidrina, que reacciona con todos los aminoácidos y derivados libres, pero con afinidades diferentes. La baja sensibilidad de este método lo vuelve inadecuado para mediciones de diferencias arterio-venosas (2).

Actualmente, la cromatografía líquida , que permite la desproteinización del suero, es un método más sensible que permite mediciones de diferencias arterio-venosas. Sin embargo, no puede reproducirse fácilmente (2).

La citrulina ha sido analizada también por la interacción hidrofílica de cromatografía/espectrometría de masa en gota de sangre resecada para evaluar la función intestinal después del trasplante (54).

El método UPLC-MS/MS (Ultra-Performance Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry) es rápido, una herramienta ideal para valorar la capacidad del enterocito de pacientes con varias condiciones patológicas (559).

Peters et al.(56) propusieron en el 2008 una prueba de generación de citrulina para evaluar la función de los enterocitos, la cual estaría lentificada o atenuada en pacientes con enfermedad celíaca y síndrome de intestino corto. Según los autores, la citrulina plasmática funciona apenas como biomarcador de la función intestinal en los casos más extremos de la enfermedad.

Consideraciones Finales y Perspectivas

La concentración de la citrulina plasmática está relacionada con la masa de enterocitos existente y también con el estado funcional de dichas células, lo que permite su utilización en la práctica clínica, por la facilidad de las técnicas actuales de dosificación y por su sensibilidad relacionada con enfermedades intestinales. En un futuro, podría aplicarse en otras condiciones patológicas que llevan a la pérdida de la integridad del epitelio intestinal, como la esquistosomosis mansónica.

Hay pocos trabajos que estudien los efectos de la hipertensión portal por esquistosomiasis sobre la mucosa del intestino delgado. No obstante, se sabe que la translocación bacteriana a través de la barrera de la mucosa intestinal, asociada a inmunodeficiencia sistémica o localizada en el tubo digestivo, ha sido postulada como fuente de sepsis en pacientes susceptibles, incluyendo cirróticos y portadores de hipertensión portal, víctimas de trauma o después de un trasplante de intestino (57,58).

Ferraz et al.(59) determinaron en 2005 la prevalencia de bacterias aerobias en los ganglios linfáticos mesentéricos de pacientes con esquistosomiasis y la forma hepato-esplénica y posible asociación con infecciones postoperatorias, cuyos resultados sugirieron que la presencia de bacterias aerobias en dichos ganglios como consecuencia de translocación bacteriana, podría tener un papel en la aparición de complicaciones postoperatorias en pacientes con esquistosomiasis, ya que en la forma avanzada de la enfermedad predominan las citocinas que modulan la respuesta inmunológica con perfil Th2.

Entre otras funciones, éstas activan los macrófagos, estimulando la producción de arginasa (60) y la consecuente disminución de la disponibilidad de la arginina en los tejidos para la producción de citrulina e óxido nítrico, importantes sustancias para la manutención e integridad del sistema inmunológico, lo que lleva a inmunodeficiencia y predisposición a infecciones.

Por otro lado, los procedimientos que producen mala absorción intestinal proximal, como el bypass gástrico, podrán ser evaluados por los niveles séricos de citrulina, lo que la torna una herramienta válida para el análisis del intestino delgado en los síndromes de mala absorción.

La citrulina plasmática es un indicador de masa metabólica funcional del enterocito, de la función global, y, por lo tanto, de pronóstico nutricional de un tubo digestivo comprometido. Por otro lado, se relaciona con el sistema inmunológico por medio de la producción de óxido nítrico a partir de la arginina. De esa forma, la perspectiva es que la dosificación sérica de la citrulina pueda aplicarse como método no invasivo de valoración de la función intestinal e inmunológica en enfermedades con acometimiento del intestino delgado y con repercusiones sobre el sistema inmune.

Plasma Citrulline Levels as Marker of Intestinal Function: Applications in Intestinal Transplantation and Digestive Diseases

Abstract

The small bowel is responsible not only of the digestion and absorption of nutrients, but also of the metabolism of certain aminoacids, among then glutamine, the principal precursor of circulating plasma citrulline.

The unique metabolism of citrulline has attracted scientific interest in reference to the clinical application as marker of intestinal function, and in some surgical procedures such as small bowel transplantation and extensive small bowel resections that lead to the short bowel syndrome. Several markers of intestinal function have been proposed, but because their low sensitivity and specificity, besides their difficult clinical application, citrulline is showing as a good noninvasive tool for the evaluation of the mass and functionality of enterocytes. The aim of this review is to describe the importance of citrulline in the evaluation of certain digestive illnesses and surgical procedures, describing its metabolism, the applications in intestinal transplantation and the perspectives of clinical application in other digestive diseases.

Key words: citrulline; glutamine; intestine, small; transplantation; short bowel syndrome

Referencias

1. WU G. Intestinal mucosa amino acid catabolism. J Nutr. 1998;128:1249-52.
2. CURIS E., CRENN P., CYNOBER L.Citrulline and the gut. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2007;10:620-6.
3. CRENN P., MESSING B., CYNOBER L. Citrulline as a biomarker of intestinal failure due to enterocyte mass reduction. Clin Nutr. 2008;27:328-39.
4. FLYNN NE., MEININGER CJ., HAYNES TE., WU G. The metabolic basis of arginine nutrition and pharmacotherapy. Biomed Pharmacother. 2002;56:427-38.
5. CHIH-KUANG C., SHUAN-PEI L., SHYUE-JYE L., TUAN-JEN W. Plasma free amino acids in Taiwan Chinese: the effect of age. Clin Chem Lab Med. 2002;40:378-82.
6. CRENN P., COUDRAY-LUCAS C., THUILLIER F., CYNOBER L., MESSING B. Postabsorptive plasma citrulline concentration is a marker of absorptive enterocyte mass and intestinal failure in humans. Gastroenterology. 2000;119:1496-505.
7. CRENN P., VAHEDI K., LAVERGNE-SLOVE A., CYNOBER L., MATUCHANSKY C., MESSING B. Plasma citrulline: A marker of enterocyte mass in villous atrophy-associated small bowel disease. Gastroenterology. 2003;124:1210-9.
8. CURIS E., NICOLIS I., MOINARD C., OSOWSKA S., ZERROUK N., BÉNAZETH S., et al. Almost all about citrulline in mammals. Amino Acids. 2005;29:177-205.
9. WINDMUELLER H., SPAETH AE. Source and fate of circulating citrulline. Am J Physiol. 1981;241:E473-80.
10. JIANFENG G., WEIMING Z., NING L., FANGNAN L., LI T., NAN L., et al. Serum citrulline is a simple quantitative marker for small intestinal enterocytes mass and absorption function in short bowel patients. J Surg Res 2005;127:177-82.
11. KATO T., GAYNOR JJ., NISHIDA S., MITTAL N., SELVAGGI G., LEVI D., et al. Zoom endoscopic monitoring of small bowel allograft rejection. Surg Endosc. 2006;20:773-82.
12. DAVID AI., SELVAGGI G., RUIZ P., GAYNOR JJ., TRYPHONOPOULOS P., KLEINER GI. et al. Blood citrulline level is an exclusionary marker for significant acute rejection after intestinal transplantation. Transplantation. 2007;84:1077-81.
13. RHOADS JM., PLUNKETT E., GALANKO J., LICHTMAN S., TAYLOR L., MAYNOR A., et al. Serum citrulline levels correlate with enteral tolerance and bowel length in infants with short bowel syndrome. J Pediatr. 2005;146:542-7.
14. BLIJLEVENS NM., LUTGENS LC., SCHATTENBERG AV., DONNELLY JP. Citrulline: a potentially simple quantitative marker of intestinal epithelial damage following myeloablative therapy. Bone Marrow Transplant. 2004;34:193-6.
15. LUTGENS LC., BLIJLEVENS NM., DEUTZ NE., DONNELLY JP., LAMBIN P., DE PAUW BE. Monitoring myeloablative therapyinduced small bowel toxicity by serum citrulline concentration: a comparison with sugar permeability tests. Cancer. 2005;103:191-9.
16. COLOMB V., FABEIRO M., DABBAS M., GOULET O., MERCKX J., RICOUR C. Central venous catheter-related infections in children on long-term home parenteral nutrition: incidence and risk factors. Clin Nutr. 2000;19:355-9.
17. DURO D., KAMIN D. Overview of short bowel syndrome and intestinal transplantation. Colomb Med. 2007;38:71-4
18. RAMAKRISHNA BS., VENKATARAMAN S., MUKHOPADHYA A. Tropical malabsorption. Postgrad Med J. 2006;82:779-87.
19. CRENN P., COUDRAY-LUCAS C., CYNOBER L., MESSING B. Postabsorptive plasma citrulline concentration: a marker of intestinal failure in humans. Transplant Proc. 1998;30:2528.
20. LILLEHEI RC., GOOTT B., MILLER FA. The physiological response of the small bowel of the dog to ischemia including prolonged in vitro preservation of the bowel with successful replacement and survival. Ann Surg. 1959;150:543-59.
21. STARZL T., KAUPP H JR. Mass homotransplantation of abdominal organs in dogs. Surg Forum. 1960;11:28-30.
22. RUÍZ J., UCHIDA H., SCHULTZ L., LILLEHEI RC. Problems in absorption and immunosuppression after intestinal allotransplantation. Am J Surg. 1972;123:297-303.
23. COHEN Z., MACGREGOR A., MOORE K., FALK RE., LANGER B., CULLEN JB. Canine small bowel transplantation: a study of the immunologic responses. Arch Surg. 1976;111:248-53.
24. KIRKMAN R. Small bowel transplantation. Transplantation. 1984;37:429-33.
25. FORTNER J., SICHUK G., LITWIN S., BEATTIE EJ JR. Immunological responses to an intestinal allograft with HLA-identical donorrecipients. Transplantation. 1972;14:531-35.
26. RAIU S., CAVIRLI M., DIDLAKE R. Experimental small bowel transplantation utilizing cyclosporine. Transplantation. 1984;38:561-66.
27. REZNICK R., CRADDOCK G., LANGER B., GILAS T., CULLEN JB. Structure and function of small bowel allografts in the dog: immunosuppression with cyclosporin A. Can J Surg. 1982;25:51-5.
28. DILIZ-PÉREZ H., MCCLURE J., BEDETTI C., HONG HQ., DE SANTIBANES E., SHAW BW JR., et al. Successful small bowel allotransplantation in dogs with cyclosporine and prednisone. Transplantation. 1984;37:126-29.
29. OKUMURA M., MESTER M. The coming of age of small bowel transplantation in humans: a historical perspective. Transplant Proc. 1992;24:1241.
30. BAÑOS FB., GUZMÁN C., HOYOS S., MENA A., ECHEVERRI C., RUIZ M., et al. Trasplante de intestino delgado: “una realidad en Colombia”. Rev Col Gastroenterol. 2008;23:166-78.
31. GRANT D., ABU-ELMAGD K., REYES J., TZAKIS A., LANGNAS A., FISHBEIN T. et al. 2003 report of the intestinal transplant registry: a new era has dawned. Ann Surg. 2005;241:607-13.
32. ABU-ELMAGD K., BOND G., MATARESE L., COSTA G., KORITSKY D., LAUGHLIN K., et al. Gut rehabilitation and intestinal transplantation. Therapy. 2005;2:853-864.
33. SCANTLEBURY V. Cadaveric and living donation. En: Shapiro R, Simmons R, Starzl T. Renal transplantation. 1a edition. Stamford: Ed. Appleton & Lange; 1997. p. 74.
34. KATO T., GAYNOR JJ., SELVAGGI G., MITTAL N., THOMPSON J., LAUGHLIN GE., et al. A. Intestinal transplantation in children: A summary of clinical outcomes and prognostic factors in 108 patients from a single center. J Gastrointest Surg. 2005;9:75-89.
35. TZAKIS AG., KATO T., LEVI DM., DEFARIA W., SELVAGGI G., WEPPLER D., et al. 100 multivisceral transplants at a single center. Ann Surg. 2005;242:480-93.
36. KATO T., TZAKIS AG., SELVAGGI G., GAYNOR JJ., DAVID AI., BUSSOTI A., et al. Intestinal and multivisceral transplantation in children. Ann Surg. 2006;243:756-66.
37. PAPPAS PA., SAUDUBRAY JM., TZAKIS AG., RABIER D., CARRENO MR., GOMEZ-MARIN O., et al. Serum citrulline and rejection in small bowel transplantation: a preliminary report. Transplantation. 2001;72:1212-6.
38. PAPPAS PA., SAUDUBRAY JM., TZAKIS AG., RABIER D., CARRENO MR., GOMEZ-MARIN O., et al. Serum citrulline as a marker of acute cellular rejection for intestinal transplantation. Transplant Proc. 2002;34:915-7.
39. PAPPAS PA., TZAKIS AG., GAYNOR JJ.,CARRENO MR., RUIZ P., HUIJING F., et al. An analysis of the association between serum citrulline and acute rejection among 26 recipients of intestinal transplant. Am J Transplant. 2004;4:1124-32.
40. GONDOLESI G., FISHBEIN T., CHEHADE M., TSCHERNIA A., MAGID M., KAUFMAN S. Serum citrulline is a potential marker for rejection of intestinal allografts. Transplant Proc. 2002;34:918-20.
41. GONDOLESI GE., KAUFMAN SS., SANSARICQ C., MAGID MS., RAYMOND K., ILEDAN LP., et al. Defining normal plasma citrulline in intestinal transplant recipients. Am J Transplant. 2004;4:414-8.
42. GONDOLESI G., GHIRARDO S., RAYMOND K., HOPPENHAUER L., SURILLO D., RUMBO C., et al. The value of plasma citrulline to predict mucosal injury in intestinal allografts. Am J Transplant. 2006;6:2786-90.
43. DAVID AI., GAYNOR JJ., ZIS PP., CONANAN L., GOLDSMITH L., ESQUENAZI V., et al. An association of lower serum citrulline levels within 30 days of acute rejection in patients following small intestine transplantation. Transplant Proc. 2006;38:1731-2.
44. RABIER D., KAMOUN P. Metabolism of citrulline in man. Amino Acids. 1995;9:299-316.
45. CAMACHO JA., OBIE C., BIERY B., GOODMAN BK., HU CA., ALMASHANU S., et al. Hyperornithinaemia-hyperammonaemiahomocitrullinuria syndrome is caused by mutations in a gene encoding a mitochondrial ornithine transporter. Nat Genet. 1999;22:151-8.
46. SANDSTROM P., TRULSSON L., GASSLANDER T., SUNDQVIST T., VON DOBELN U., SVANVIK J. Serum amino acid profile in patients with acute pancreatitis. Amino Acids. 2008;35:225-31.
47. RIBES A., RIUDOR E., VALCÁREL R., SALVÁ A., CASTELLÓ F., MURILLO S., et al. Pearson syndrome: altered tricarboxylic acid and ureacycle metabolites, adrenal insufficiency and corneal opacities. J Inherit Metab Dis. 1993;16:537-40.
48. BRANDT CT., LEITE CRC., MANHÃES-DE-CASTRO FM., MACEDO EMC., SILVA RPP., CASTRO CMM. Nitric oxide monocyte production levels in patients with the hepatosplenic form of Schistosoma mansoni infection who underwent splenectomy, ligature of the left gastric vein and auto implantation of spleen tissue in the major omentum. Acta Cirur Bras. 2006;21:285-90.
49. BANSAL V., RODRIGUEZ P., WU G., EICHLER DC., ZABALETA J., TAHERI F., et al. Citrulline can preserve proliferation and prevent the loss of CD3 zeta chain under conditions of low arginine. J Parenter Enteral Nutr. 2004;28:423-30.
50. OSOWSKA S., DUCHEMANN T., WALRAND S., PAILLARD A., BOIRIE J., CYNOBER L., et al. Citrulline modulates muscle protein metabolism in old malnourished rats. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2006;291:E582-6.
51. SMITH HA., CANTER JA., CHRISTIAN KG., DRINKWATER DC., SCHOLL FG., CHRISTMAN BW., et al. Nitric oxide precursors and congenital heart surgery: a randomized controlled trial of oral citrulline. J Thorac Cardiovasc Surg. 2006;132:58-65.
52. CERIOTTI G. Ultramicrodetermination of plasma urea by reaction with diacetylmonoxime-antipyrine without deproteinization. Clin Chem. 1971;17:400-2.
53. MOORE RB., KAUFFMAN NJ. Simultaneous determination of citrulline and urea using diacetylmonoxime. Anal Biochem. 1970;33:263-72.
54. YU HC., TUTEJA S., MOON JI., KLEINER GI., CONANAN L., GAYNOR JJ., et al. Utilization of dried blood spot citrulline level as a noninvasive method for monitoring graft function following intestinal transplantation. Transplantation. 2005;80:1729-33.
55. DEMACKER PN., BEIJERS AM., VAN DAAL H., DONNELLY JP., BLIJLEVENS NM., VAN DEN OUWELAND JM. Plasma citrulline measurement using UPLC tandem mass-spectrometry to determine small intestinal enterocyte pathology. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2009;877:387-92.
56. PETERS JH., WIERDSMA NJ., TEERLINK T., VAN LEEUWEN PA., MULDER CJ., VAN BODEGRAVEN AA. The citrulline generation test: proposal for a new enterocyte function test. Aliment Pharmacol Ther. 2008;27:1300-10.
57. SPATH G., HIRNER A. Microbial translocation and impairment of mucosal immunity induced by an elemental diet in rats in prevented by selective decontamination of the digestive tract. Eur J Surg. 1998;164:223-8.
58. CUCCHETTI A., SINISCALCHI A., BAGNI A., LAURO A., CESCON M., ZUCCHINI N., et al. Bacterial translocation in adult small bowel transplantation. Transplant Proc. 2009;41:1325-30.
59. FERRAZ AAB., CAMPOS JM., ARAÚJO JÚNIOR JG., ALBUQUERQUE AC., FERRAZ EM. Gut bacterial translocation and postoperative infections: A prospective study in schistosomotic patients. Surg Infect. 2005;6:197-201.
60. MODOLELL M., CORRALIZA IM., LINK F., SOLER G., EICHMANN K. Reciprocal regulation of the nitric oxide synthase/arginase balance in mouse bone marrow-derived macrophages by TH1 and TH2 cytokines. Eur J Immunol. 1995;25:1101-4.

Correspondencia:

LUCIANA TEIXEIRA DE SIQUEIRA, MD
Correo electrónico: lt-siqueira@uol.com.br
Recife, Brasil.

Revista Colombiana de Cirugía

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